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細胞慢病毒轉(zhuǎn)染預(yù)實驗方案分享

發(fā)布時間:2025-02-24    瀏覽次數(shù):383

1.預(yù)實驗?zāi)康模?/strong>確定慢病毒對細胞的感染MOI和最佳的感染條件,為正式實驗提供參考,如感染試劑的選擇,感染時的總體積感染后換液的時間等。

2.預(yù)實驗分組:按照不同培養(yǎng)條件將實驗分為4組。分別為:

Ⅰ、Control組(C組):監(jiān)控實驗過程中細胞生長是否正常(加入完全培養(yǎng)基,不含病毒和助轉(zhuǎn)染試劑)
Ⅱ、接毒組(M組):觀察常規(guī)培養(yǎng)條件下病毒對細胞的感染效果(首先用陰性對照(NC)病毒來摸條件,加入一定量的完全培養(yǎng)基和病毒液)
Ⅲ、病毒液+HiTransG A(助轉(zhuǎn)染試劑)組(A組):觀察HiTransG A是否可以提升感染效果(完全培養(yǎng)基+HiTransG A+NC病毒液)
Ⅳ、病毒液+HiTransG P(助轉(zhuǎn)染試劑)組(P組):觀察HiTransG P是否可以提升感染效果(完全培養(yǎng)基+HiTransG P+NC病毒液)

4組預(yù)實驗

3.預(yù)實驗操作方案

3.1.壁細胞

Day1:接種細胞:用完全培養(yǎng)基制備3ml密度為3~5×104個/ml細胞懸液。具體細胞密度可根據(jù)實驗所用的細胞生長情況及大小進行調(diào)節(jié),取100μl加入96孔板中,共16個孔,其中3個孔作為Control組,37°C 培養(yǎng)16-24h,至細胞匯合度為20-30%(也可直接鋪板時時直接鋪20-30%的細胞,,貼壁較快的細胞等待4-6h及可進行接毒)對于大部分細胞,我們通常認(rèn)為培養(yǎng)24h后細胞數(shù)量是鋪板時數(shù)量的兩倍,每孔細胞數(shù)量約1W。

Day2:感染

Ⅰ、從冰箱取出病毒,冰上融化。用完全培養(yǎng)基依次將病毒稀釋至滴度1x10^8 TU/ml, 5x10^7TU/ml, 2.5x10^7TU/ml, 1x10^7TU/ml,稀釋完成后每組最少35μl。
Ⅱ、吸掉各孔中上清液,按照表1更換培養(yǎng)基, 加入病毒及相應(yīng)感染增強液, 混勻,繼續(xù)培養(yǎng)。感染后16-24h用完全培養(yǎng)基進行換液,過程中觀察細胞形態(tài),發(fā)生變化時可以提前到8h換液, 保持細胞正常生長。

表1.預(yù)實驗分組及感染

表1.預(yù)實驗分組及感染

Day3-4:繼續(xù)培養(yǎng):中途可根據(jù)細胞的生長狀況進行換液,保持細胞活性。

Day5:感染效果確認(rèn):感染約72-96h,熒光表達豐度較高時,用顯微鏡觀察。感染效率80%左右,且細胞生長良好的組所對應(yīng)的感染條件和MOI即可以作為后續(xù)感染實驗的依據(jù)。

感染效果確認(rèn)

3.2.懸浮細胞

相對于貼壁細胞,懸浮細胞在第一天即可完成接種和感染操作,且接種細胞數(shù)量需在1W左右 cells/孔,接種時同時感染病毒,感染8-24h,根據(jù)細胞生長情況進行加液操作,無需換液,以免損失細胞。其余操作同貼壁細胞。

3.3.半懸半貼細胞

實驗方案:略。建議參考懸浮細胞操作方案進行。

注解:

MOI: 復(fù)感染指數(shù),是指病毒對細胞的感染能力,MOI越高,細胞越難被感染。通常把某株細胞有80%被感染時所用的病毒顆粒數(shù)和細胞數(shù)目的比值作為該株細胞的MOI。
MOI=(病毒滴度 × 病毒體積) / 細胞數(shù)目

HitransG A :吉凱基因自主研發(fā)的病毒感染增強液。它的主要成分是一種新型的高分子非離子表面活性劑,同時也是一種細胞保護劑和促進吸收劑。它可以通過提高細胞表面活性,增加病毒與細胞的接觸面積,促進病毒高效感染細胞,且對細胞毒性極低,適合敏感細胞使用。
HitransG P:吉凱基因自主研發(fā)的病毒感染增強液。它的主要成分是一種陽離子聚合物,通過抑制細胞膜與病毒之間的電荷排斥, 增加慢病毒對細胞的感染效率。本產(chǎn)品可以極大提高細胞感染效率,且細胞毒性顯著低于Polybrene。

參考資料:GE042.6重組慢病毒載體使用手冊

文章來源:環(huán)凱轉(zhuǎn)載于“ 愛吃洋芋的酸菜魚”公眾號;原標(biāo)題:“細胞慢病毒轉(zhuǎn)染預(yù)實驗方案分享”;作者~ GAPDH。
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細胞培養(yǎng)基